Plant Total RNA Isolation Kit Total RNA Purificaiton Kit for Plant Low ໃນ Polysaccharides ແລະ Polyphenols
ຂໍ້ມູນຈໍາເພາະ
50 Preps, 200 Preps
ຊຸດດັ່ງກ່າວໃຊ້ຖັນ spin ແລະສູດທີ່ພັດທະນາໂດຍ Foregene, ເຊິ່ງປະສິດທິພາບສາມາດສະກັດ RNA ທັງຫມົດທີ່ມີຄວາມບໍລິສຸດແລະຄຸນນະພາບສູງຈາກເນື້ອເຍື່ອພືດຕ່າງໆທີ່ມີເນື້ອໃນ polysaccharides ແລະ polyphenols ຕ່ໍາ.ສໍາລັບຕົວຢ່າງພືດທີ່ມີເນື້ອໃນ polysaccharides ຫຼື polyphenols ສູງ, ແນະນໍາໃຫ້ໃຊ້ Plant Total RNA Isolation Plus Kit ເພື່ອໃຫ້ໄດ້ຜົນການສະກັດເອົາ RNA ທີ່ດີກວ່າ.ຊຸດດັ່ງກ່າວສະຫນອງຖັນ DNA-ທໍາຄວາມສະອາດທີ່ສາມາດເອົາ DNA genomic ອອກຈາກ supernatant ແລະເນື້ອເຍື່ອ lysate ໄດ້ຢ່າງງ່າຍດາຍ.ຖັນ RNA ເທົ່ານັ້ນສາມາດຜູກມັດ RNA ໄດ້ຢ່າງມີປະສິດທິພາບ.ຊຸດສາມາດປຸງແຕ່ງຕົວຢ່າງຈໍານວນຫລາຍໃນເວລາດຽວກັນ.
ລະບົບທັງຫມົດບໍ່ມີ RNase, ດັ່ງນັ້ນ RNA ບໍລິສຸດຈະບໍ່ຖືກທໍາລາຍ.Buffer PRW1 ແລະ Buffer PRW2 ສາມາດຮັບປະກັນວ່າ RNA ທີ່ໄດ້ຮັບບໍ່ໄດ້ປົນເປື້ອນດ້ວຍທາດໂປຼຕີນ, DNA, ion, ແລະທາດປະສົມອິນຊີ.
ອົງປະກອບຊຸດ
| Buffer PSL1, Buffer PS, Buffer PSL2 |
| Buffer PRW1, Buffer PRW2 |
| RNase-Free ddH2O, ຖັນການທໍາຄວາມສະອາດ DNA |
| ຖັນ RNA ເທົ່ານັ້ນ |
| ຄໍາແນະນໍາ |
ຄຸນນະສົມບັດແລະຂໍ້ດີ
■ປະຕິບັດງານຢູ່ໃນອຸນຫະພູມຫ້ອງ (15-25℃) ຕະຫຼອດຂະບວນການທັງຫມົດ, ໂດຍບໍ່ມີການອາບນ້ໍາກ້ອນແລະ centrifugation ຕ່ໍາອຸນຫະພູມ.
■ ຄົບຊຸດ RNase-Free, ບໍ່ຈໍາເປັນຕ້ອງກັງວົນກ່ຽວກັບການເຊື່ອມໂຊມຂອງ RNA.
■ ຖັນການທໍາຄວາມສະອາດ DNA ຜູກມັດກັບ DNA ໂດຍສະເພາະ, ດັ່ງນັ້ນຊຸດສາມາດກໍາຈັດການປົນເປື້ອນຂອງ DNA genomic ໂດຍບໍ່ມີການເພີ່ມ DNase.
■ ຜົນຜະລິດ RNA ສູງ: ຖັນ RNA ເທົ່ານັ້ນ ແລະສູດທີ່ເປັນເອກະລັກສາມາດຊໍາລະ RNA ໄດ້ຢ່າງມີປະສິດທິພາບ.
■ ຄວາມໄວໄວ: ງ່າຍຕໍ່ການປະຕິບັດງານແລະສາມາດສໍາເລັດພາຍໃນ 30 ນາທີ.
■ ຄວາມປອດໄພ: ບໍ່ຈໍາເປັນຕ້ອງໃຊ້ສານຕ້ານອະນຸມູນອິດສະລະ.
■ ຄຸນະພາບສູງ: ຊິ້ນສ່ວນ RNA ບໍລິສຸດແມ່ນມີຄວາມບໍລິສຸດສູງ, ບໍ່ມີທາດໂປຼຕີນແລະສິ່ງປົນເປື້ອນອື່ນໆ, ແລະສາມາດຕອບສະຫນອງຄໍາຮ້ອງສະຫມັກທົດລອງຕ່າງໆ.
ຄໍາຮ້ອງສະຫມັກຊຸດ
ມັນເຫມາະສົມສໍາລັບການສະກັດເອົາແລະການຊໍາລະລ້າງຂອງ RNA ທັງຫມົດຈາກຕົວຢ່າງເນື້ອເຍື່ອພືດສົດຫຼືແຊ່ແຂງ (ໂດຍສະເພາະແມ່ນເນື້ອເຍື່ອພືດສົດ) ທີ່ມີເນື້ອໃນ polysaccharide ແລະ polyphenol ຕ່ໍາ.
ກະແສວຽກ
ແຜນວາດ
Plant Total RNA Isolation Kit Plus ປຸງແຕ່ງໃບສົດ 50mg ຂອງ polysaccharides ແລະ polyphenols, ແລະ 5% RNA ບໍລິສຸດໄດ້ຖືກທົດສອບໂດຍ electrophoresis.
1: ກ້ວຍ
2: Ginkgo
3: ຝ້າຍ
4: ໝາກນາວ
ການເກັບຮັກສາແລະອາຍຸການເກັບຮັກສາ
ຊຸດສາມາດເກັບຮັກສາໄວ້ສໍາລັບ 12 ເດືອນໃນອຸນຫະພູມຫ້ອງ (15-25 ℃) ໃນສະພາບແວດລ້ອມແຫ້ງ, ແລະ 2-8 ℃ສໍາລັບການໃຊ້ເວລາດົນກວ່າ (24 ເດືອນ).
Buffer PSL1 ສາມາດເກັບຮັກສາໄວ້ທີ່ 4 ℃ສໍາລັບ 1 ເດືອນຫຼັງຈາກເພີ່ມ 2-hydroxy-1-ethanethiol (ທາງເລືອກ).
ຄູ່ມືການວິເຄາະບັນຫາ
ການວິເຄາະຕໍ່ໄປນີ້ຂອງບັນຫາທີ່ທ່ານອາດຈະພົບໃນພືດທັງໝົດRNA extraction will help you with your experiments. In addition, for other experimental or technical problems in addition to operating instructions and problem analysis, we have dedicated technical support to help you. If you have any needs, please contact us at: 028-83360257 or E-mali : Tech@foregene.com.
ຖັນ spin ແມ່ນອຸດຕັນ
ການຂັດຂວາງຂອງຖັນ spin ຈະເຮັດໃຫ້ຜົນຜະລິດ RNA ຫຼຸດລົງຫຼືແມ້ກະທັ້ງບໍ່ສາມາດຖືກບໍລິສຸດເພື່ອໃຫ້ໄດ້ RNA, ແລະຄຸນນະພາບຂອງ RNA ທີ່ໄດ້ຮັບຈະຕໍ່າ.
ການວິເຄາະສາເຫດທົ່ວໄປ:
1. ຕົວຢ່າງບໍ່ໄດ້ແຕກຫມົດ.
ການແຕກແຍກຕົວຢ່າງທີ່ບໍ່ຄົບຖ້ວນສາມາດຂັດຂວາງຄໍລໍາທໍາຄວາມສະອາດ DNA, ເຊິ່ງຍັງສາມາດສົ່ງຜົນກະທົບຕໍ່ຜົນຜະລິດ RNA ແລະຄຸນນະພາບ.ພວກເຮົາແນະນໍາວ່າໃນເວລາທີ່ປະຕິບັດການແຕກແຍກຕົວຢ່າງ, ຢ່າງວ່ອງໄວ grind ໃນຈໍານວນພຽງພໍຂອງໄນໂຕຣເຈນຂອງແຫຼວເພື່ອທໍາລາຍເນື້ອເຍື່ອເຊັ່ນ: ຝາຈຸລັງແລະເຍື່ອຈຸລັງຂອງຕົວຢ່າງຫຼາຍເທົ່າທີ່ເປັນໄປໄດ້.ສໍາລັບຕົວຢ່າງພືດຂອງ polyphenol polysaccharides, ພວກເຮົາແນະນໍາໃຫ້ທ່ານໃຊ້ Plant Total RNA Isolation Kit Plus.
2.Aspirate the DNA-Cleaning Column isolated supernatant, aspirate the cell debris pellet.
ເມັດສິ່ງເສດເຫຼືອຂອງຈຸລັງທີ່ດູດຊຶມສາມາດອຸດຕັນຖັນ RNA ເທົ່ານັ້ນໃນລະຫວ່າງຂັ້ນຕອນການດູດຊຶມ RNA (ເບິ່ງຂັ້ນຕອນທີ 5 ຂອງຂັ້ນຕອນ, ຂັ້ນຕອນທີ 6 ຂອງຂັ້ນຕອນ polysaccharide polyphenol).ພວກເຮົາແນະນຳວ່າຕ້ອງລະມັດລະວັງໃນເວລາດູດຊືມ supernatant ນີ້ເພື່ອບໍ່ໃຫ້ເສດເຊລຖືກດູດຊຶມ.
3. ຈໍານວນຕົວຢ່າງເບື້ອງຕົ້ນແມ່ນໃຫຍ່ເກີນໄປ.
ການນໍາໃຊ້ຕົວຢ່າງຫຼາຍເກີນໄປຈະເຮັດໃຫ້ການແຍກຕົວຢ່າງບໍ່ສົມບູນຫຼື lysis ບໍ່ສົມບູນຂອງຈຸລັງໂດຍ Buffer PRL1 ຫຼື Buffer PSL1, ສົ່ງຜົນໃຫ້ຄໍລໍາທໍາຄວາມສະອາດອຸດຕັນສໍາລັບການດໍາເນີນງານການບໍລິສຸດ.Plant Total RNA Isolation Kit ມີປະລິມານສູງສຸດໃນເບື້ອງຕົ້ນຂອງ 50 ມລກ ຕໍ່ການທຳຄວາມສະອາດຄັ້ງດຽວຂອງຕົວຢ່າງທີ່ດຳເນີນການ.ສໍາລັບຕົວຢ່າງພືດຂອງ polyphenol polysaccharides, ພວກເຮົາແນະນໍາໃຫ້ທ່ານລອງ Plant Total RNA Isolation Kit Plus.
4. ອຸນຫະພູມຂອງ centrifuge ຕ່ໍາເກີນໄປ.
ການແຍກ ແລະ ຊໍາລະລ້າງ RNA ທັງໝົດຍົກເວັ້ນການລົບກວນຂອງທາດໄນໂຕຣເຈນຂອງເນື້ອເຍື່ອຕົວຢ່າງ, ຂັ້ນຕອນທັງໝົດແມ່ນດໍາເນີນຢູ່ໃນອຸນຫະພູມຫ້ອງ (20-25 °C).ບາງເຄື່ອງສູນພັນທີ່ມີອຸນຫະພູມຕໍ່າມີອຸນຫະພູມຕໍ່າກວ່າ 20 °C, ເຊິ່ງສາມາດເຮັດໃຫ້ເກີດການອຸດຕັນໃນຖັນ DNA-ທຳຄວາມສະອາດ ແລະ/ຫຼືຖັນ RNA ເທົ່ານັ້ນ.ຖ້າສິ່ງນີ້ເກີດຂື້ນ, ໃຫ້ຕັ້ງອຸນຫະພູມສູນກາງເປັນ 20-25 °C ແລະໃຫ້ຄວາມອົບອຸ່ນກ່ອນການປະສົມ lysis ແລະ / ຫຼືການເພີ່ມ supernatant ແຍກເອທານອນເຖິງ 37 ° C.
ບໍ່ມີ RNA ສະກັດຫຼື RNA ຜົນຜະລິດແມ່ນຕໍ່າ
ປົກກະຕິແລ້ວມີຫຼາຍປັດໃຈທີ່ມີຜົນກະທົບຕໍ່ປະສິດທິພາບການຟື້ນຕົວ, ເຊັ່ນ: ເນື້ອໃນ RNA ຕົວຢ່າງ, ວິທີການປະຕິບັດງານ, ປະລິມານ elution, ແລະອື່ນໆ.
ການວິເຄາະສາເຫດທົ່ວໄປດັ່ງລຸ່ມນີ້:
1.ອາບນ້ຳກ້ອນ ຫຼື ອຸນຫະພູມຕ່ຳ (4°C) ໄດ້ຖືກປະຕິບັດໃນລະຫວ່າງການດຳເນີນການ.
ຄໍາແນະນໍາ: ເຮັດວຽກຢູ່ໃນອຸນຫະພູມຫ້ອງ (15-25 ° C) ໃນຂະບວນການທັງຫມົດ, ບໍ່ຄວນເຮັດອາບນ້ໍາກ້ອນແລະ centrifugation ຕ່ໍາອຸນຫະພູມ.
2.RNA ໄດ້ຖືກຊຸດໂຊມຍ້ອນການເກັບຮັກສາຕົວຢ່າງທີ່ບໍ່ຖືກຕ້ອງຫຼືການເກັບຮັກສາຕົວຢ່າງໃນໄລຍະຍາວ.
ຄຳແນະນຳ: ຕົວຢ່າງທີ່ເກັບໄດ້ສົດໆ ຄວນຖືກແຊ່ແຂງໄວໃນທາດໄນໂຕຣເຈນທີ່ເປັນຂອງແຫຼວ, ແລ້ວເກັບໄວ້ໃນອຸນຫະພູມ -80 ອົງສາ C ເປັນເວລາດົນ, ຫຼີກລ້ຽງການແຊ່ແຂງ ແລະ ແຊ່ແຂງຊ້ຳໆ;ຫຼືທັນທີແຊ່ຕົວຢ່າງໃນການແກ້ໄຂ RNA stabilizer RNAlater (ຕົວຢ່າງສັດ).
3.ການແຕກແຍກຕົວຢ່າງບໍ່ພຽງພໍແລະ lysis ນໍາໄປສູ່ການອຸດຕັນຂອງຖັນ purification.
ຄໍາແນະນໍາ: ເມື່ອຂັດເນື້ອເຍື່ອ, ກະລຸນາຮັບປະກັນວ່າເນື້ອເຍື່ອແມ່ນດິນພຽງພໍ, ແລະໂອນມັນໄປໃສ່ Buffer PSL1 ທີ່ກຽມໄວ້ລ່ວງຫນ້າ (ຢືນຢັນວ່າອັດຕາສ່ວນທີ່ຖືກຕ້ອງຂອງ β-ME ໄດ້ຖືກເພີ່ມ, ເບິ່ງຂັ້ນຕອນທີ 1 ຂອງຂັ້ນຕອນ).
4.The eluent ໄດ້ຖືກເພີ່ມບໍ່ຖືກຕ້ອງ.
ຄໍາແນະນໍາ: ໃຫ້ແນ່ໃຈວ່າ RNase-Free ddH2O ແມ່ນ dripped ເຂົ້າ ໄປ ໃນ ກາງ ຂອງ ເຍື່ອ ຖັນ ບໍ ລິ ສຸດ ໄດ້ .
5.ປະລິມານທີ່ຖືກຕ້ອງຂອງເອທານອນຢ່າງແທ້ຈິງບໍ່ໄດ້ຖືກເພີ່ມໃສ່ Buffer PSL2 ຫຼື Buffer PRW2.
ຄໍາແນະນໍາ: ກະລຸນາປະຕິບັດຕາມຄໍາແນະນໍາ, ເພີ່ມປະລິມານທີ່ຖືກຕ້ອງຂອງເອທານອນຢ່າງແທ້ຈິງໃສ່ Buffer PSL2 ແລະ Buffer PRW2 ແລະປະສົມໃຫ້ດີກ່ອນທີ່ຊຸດຈະຖືກນໍາໃຊ້.
6.ປະລິມານຂອງຕົວຢ່າງເນື້ອເຍື່ອແມ່ນບໍ່ເຫມາະສົມ.
ຄໍາແນະນໍາ: ໃຊ້ 50 mg ຂອງເນື້ອເຍື່ອຕໍ່ 500 μlຂອງ Buffer PSL1.ການໃຊ້ເນື້ອເຍື່ອຫຼາຍເກີນໄປຈະຫຼຸດລົງປະລິມານຂອງ RNA ທີ່ສະກັດອອກມາແລະຄວາມບໍລິສຸດຂອງ RNA ຜົນໄດ້ຮັບຈະຫຼຸດລົງເຊັ່ນກັນ.ພວກເຮົາແນະນໍາຢ່າງແຂງແຮງວ່າປະລິມານຕົວຢ່າງເບື້ອງຕົ້ນບໍ່ຄວນເກີນ 50 ມລກຕໍ່ການປະຕິບັດການສະກັດ RNA.
7. ປະລິມານ elution ທີ່ບໍ່ເຫມາະສົມ ຫຼື elution ບໍ່ຄົບຖ້ວນ.
ຄໍາແນະນໍາ: ປະລິມານ eluent ຂອງຖັນ purification ແມ່ນ 50-200 μl;ຖ້າຜົນກະທົບຂອງ elution ບໍ່ເປັນທີ່ພໍໃຈ, ແນະນໍາໃຫ້ຂະຫຍາຍເວລາໃນອຸນຫະພູມຫ້ອງຫຼັງຈາກເພີ່ມ RNase-Free ddH ທີ່ມີຄວາມຮ້ອນກ່ອນ.2O, ເຊັ່ນ: 5-10 ນາທີ.
8. ຖັນການຊໍາລະລ້າງມີສານຕົກຄ້າງຂອງເອທານອນຫຼັງຈາກການລ້າງດ້ວຍ Buffer PRW2.
ຄໍາແນະນໍາ: ຖ້າທໍ່ເປົ່າຖືກຈຸດສູນກາງສໍາລັບ 1 ນາທີແລະຍັງມີເອທານອນທີ່ຍັງເຫຼືອຫຼັງຈາກການລ້າງຢູ່ໃນ Buffer PRW2, ທ່ານສາມາດເພີ່ມເວລາຂອງການຫມູນວຽນທໍ່ເປົ່າເປັນ 2 ນາທີ, ຫຼືວາງຄໍລໍາຊໍາລະລ້າງຢູ່ໃນອຸນຫະພູມຫ້ອງເປັນເວລາ 5 ນາທີເພື່ອເອົາເອທານອນທີ່ຕົກຄ້າງອອກຢ່າງເຕັມສ່ວນ.
9.ຊຸດດັ່ງກ່າວຖືກນໍາໃຊ້ບໍ່ຖືກຕ້ອງ.
ຄໍາແນະນໍາ: ສໍາລັບຕົວຢ່າງພືດຂອງ polyphenolic polysaccharides, ການນໍາໃຊ້ຊຸດທົ່ວໄປເຊັ່ນ Plant Total RNA Isolation Kit ອາດຈະບໍ່ສາມາດໄດ້ຮັບຕົວຢ່າງ RNA ທີ່ເຫມາະສົມ.ພວກເຮົາແນະນໍາໃຫ້ທ່ານໃຊ້ Plant Total RNA IsolationKit Plus, ເຊິ່ງຖືກອອກແບບມາເປັນພິເສດສໍາລັບຕົວຢ່າງພືດ polyphenolic polysaccharide.ຊຸດທີ່ພັດທະນາໂດຍສະເພາະສໍາລັບການສະກັດ RNA ຈາກຕົວຢ່າງຂອງພືດ polyphenol ແລະ polysaccharide.
OD260/OD280 ຄ່າຕໍ່າ
elution RNA ກັບ ddH2O ແລະໃຊ້ສໍາລັບການອ່ານ spectrophotometer ສົ່ງຜົນໃຫ້ຄ່າ OD260/OD280 ຕໍ່າ.ພວກເຮົາແນະນໍາໃຫ້ໃຊ້ 10 mM Tris-HCl, pH 7.5 (ແທນທີ່ຈະເປັນ RNase-Free ddH.2O ເພື່ອຍົກໃຫ້ເຫັນ RNA) ເພື່ອໃຫ້ໄດ້ຄ່າ OD260/OD280 ທີ່ຂ້ອນຂ້າງຖືກຕ້ອງ, ໃຫ້ເບິ່ງ “ການວິເຄາະຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນ ແລະ ການເຮັດໃຫ້ບໍລິສຸດຂອງ RNA” ໃນໜ້າ 19.
RNA ບໍລິສຸດຖືກທໍາລາຍ
ຄຸນນະພາບຂອງ RNA ບໍລິສຸດແມ່ນກ່ຽວຂ້ອງກັບປັດໃຈເຊັ່ນ: ການເກັບຮັກສາຕົວຢ່າງ, ການປົນເປື້ອນ RNase, ແລະການຫມູນໃຊ້.
ການວິເຄາະສາເຫດທົ່ວໄປ:
1.ຕົວຢ່າງເນື້ອເຍື່ອບໍ່ໄດ້ຖືກເກັບຮັກສາໄວ້ໃນເວລາຫຼັງຈາກການເກັບລວບລວມ.
ຄໍາແນະນໍາ: ຖ້າຕົວຢ່າງເນື້ອເຍື່ອບໍ່ໄດ້ຖືກນໍາໃຊ້ໃນໄລຍະເວລາຫຼັງຈາກການເກັບລວບລວມ, ກະລຸນາເກັບໄວ້ໃນໄນໂຕຣເຈນຂອງແຫຼວໃນອຸນຫະພູມຕ່ໍາໃນທັນທີຫຼືໂອນໃຫ້ເຂົາເຈົ້າເຖິງ -80 ° C ສໍາລັບການເກັບຮັກສາໃນໄລຍະຍາວຫຼັງຈາກ freezing ໄວໃນໄນໂຕຣເຈນຂອງແຫຼວ, ຫຼືທັນທີ immerse ຕົວຢ່າງໃນການແກ້ໄຂ RNA stabilizer RNAlater (ຕົວຢ່າງສັດ).ສໍາລັບການສະກັດເອົາ RNA, ພະຍາຍາມໃຊ້ຕົວຢ່າງເນື້ອເຍື່ອທີ່ເກັບມາສົດໆ.
2.Repeated freezing ແລະ thawing ຂອງຕົວຢ່າງເນື້ອເຍື່ອ.
ຄຳແນະນຳ: ເມື່ອເກັບຕົວຢ່າງເນື້ອເຍື່ອ, ມັນດີທີ່ສຸດທີ່ຈະຕັດມັນອອກເປັນຕ່ອນນ້ອຍໆ ເພື່ອເກັບຮັກສາໄວ້, ແລະ ເອົາສ່ວນໜຶ່ງອອກມາເມື່ອໃຊ້ເພື່ອຫຼີກລ່ຽງການເສື່ອມໂຊມຂອງ RNA ທີ່ເກີດຈາກການແຊ່ແຂງ ແລະ ແຊ່ແຂງຊ້ຳໆ.
3.RNase ໄດ້ຖືກນໍາສະເຫນີຢູ່ໃນຫ້ອງປະຕິບັດການຫຼືບໍ່ໃສ່ຖົງມື, ຫນ້າກາກ, ແລະອື່ນໆ.
ຄໍາແນະນໍາ: ການທົດລອງການສະກັດເອົາ RNA ແມ່ນປະຕິບັດໄດ້ດີທີ່ສຸດໃນການດໍາເນີນງານ RNA ແຍກຕ່າງຫາກ, ແລະຕາຕະລາງຫ້ອງທົດລອງຄວນໄດ້ຮັບການອະນາໄມກ່ອນການທົດລອງ, ແລະຄວນໃສ່ຖົງມືແລະຫນ້າກາກທີ່ຖິ້ມໄດ້ໃນລະຫວ່າງການທົດລອງເພື່ອຫຼີກເວັ້ນການທໍາລາຍ RNA ທີ່ເກີດຈາກການນໍາ RNase ໃນຂອບເຂດສູງສຸດ.
4.The reagent ແມ່ນປົນເປື້ອນໂດຍ RNase ໃນລະຫວ່າງການນໍາໃຊ້.
ຄຳແນະນຳ: ປ່ຽນຊຸດໃໝ່ຂອງຊຸດສະກັດ RNA ທັງໝົດຂອງພືດສຳລັບການທົດລອງທີ່ກ່ຽວຂ້ອງ.
5.The centrifuge tubes ແລະ pipette ຄໍາແນະນໍາທີ່ໃຊ້ສໍາລັບການຫມູນໃຊ້ RNA ແມ່ນປົນເປື້ອນດ້ວຍ RNase.
ຄໍາແນະນໍາ: ໃຫ້ແນ່ໃຈວ່າທໍ່ centrifuge, pipette, pipettes, ແລະອື່ນໆທີ່ໃຊ້ໃນການສະກັດເອົາ RNA ແມ່ນ RNase-Free ທັງຫມົດ.
ຄູ່ມືການສອນ:
